基本原理和用途

PI（碘化丙啶）是一種核酸染色劑，它能夠與DNA和RNA結合并發(fā)光。PI染色通常用于區(qū)分活細胞和死細胞，因為它不能穿透完整的細胞膜，但可以染色細胞膜受損的死細胞。在流式細胞儀分析中，常被用來檢測細胞凋亡和細胞周期。凋亡細胞由于細胞膜的變化，會吸收PI并發(fā)出紅色熒光，而活細胞則不會被染色。

實驗步驟

 1.樣本準備：

    1.1收集懸浮細胞或用yidanbaimei消化貼壁細胞以制備單細胞懸液。

    1.2對于新鮮實體組織，清洗后剪碎并用酶消化，然后過濾以分離組織和細胞。

    1.3石蠟切片組織需脫蠟、水化后，用酶消化以分離細胞。

  2.固定：

     將準備好的單細胞懸液用70%乙醇固定，并在4℃下保存?zhèn)溆谩?/p>

  3.染色：

    3.1使用RNA酶A處理固定的細胞，以消化RNA，避免其與PI結合產生背景信號。

    3.2加入PI染液，通常包含PI和適量的Triton X-100（用于滲透細胞膜），在4℃下避光孵育30分鐘。

  4.上機檢測：

    使用流式細胞儀進行檢測，激發(fā)波長為488nm，記錄紅色熒光信號。

  5.結果觀察：

    分析PI的紅色熒光強度，以定量死亡細胞的比例。在細胞周期分析中，可以根據DNA含量的不同來區(qū)分細胞在G0/G1、S和G2/M階段。

請注意，這些步驟可能需要根據具體實驗設計和細胞類型進行適當的調整。在操作過程中，應采取適當的安全措施，因為PI是一種潛在的致癌物質.

在細胞培養(yǎng)和組織學中的應用

在細胞培養(yǎng)中，PI染色可以用來監(jiān)測細胞毒性和藥物對細胞增殖的影響。通過染色，研究人員可以評估細胞在處理后的存活率和細胞周期的變化。在組織學中，可以用于標記壞死細胞，幫助研究組織損傷和疾病過程中的細胞死亡。

注意事項和實驗技巧

在進行染色時，需要注意PI的毒性和潛在的致癌性，因此應在通風良好的環(huán)境中操作，并采取適當的防護措施。此外，染色過程中應避免光照，因為PI對光敏感，可能會降解。在流式細胞儀分析時，應調整適當的熒光補償和電壓設置，以獲得準確的結果。